文档介绍：实验一蛋白质含量测定
本实验的目的是学会各种蛋白质含量的测定方法。了解各种测定方法的基本原
理和优缺点。
蛋白质含量测定法,是生物化学研究中最常用、最基本的分析方法之一。目前
常用的有四种古老的经典方法,即定氮法,双缩尿法(Biuret 法)、Folin-酚试剂
法(Lowry 法)和紫外吸收法。另外还有一种近十年才普遍使用起来的新的测定法,
即考马斯亮蓝法(Bradford 法)。其中 Bradford 法和 Lowry 法灵敏度最高,比紫外
吸收法灵敏 10~20 倍,比 Biuret 法灵敏 100 倍以上。定氮法虽然比较复杂,但较
准确,往往以定氮法测定的蛋白质作为其他方法的标准蛋白质。
值得注意的是,这后四种方法并不能在任何条件下适用于任何形式的蛋白质,
因为一种蛋白质溶液用这四种方法测定,有可能得出四种不同的结果。每种测定法
都不是完美无缺的,都有其优缺点。在选择方法时应考虑:①实验对测定所要求的
灵敏度和精确度;②蛋白质的性质;③溶液中存在的干扰物质;④测定所要花费的
时间。
考马斯亮蓝法(Bradford 法),由于其突出的优点,正得到越来越广泛的应用。
一、微量凯氏(Kjeldahl)定氮法
样品与浓硫酸共热。含氮有机物即分解产生氨(消化),氨又与硫酸作用,变成
硫酸氨。经强碱碱化使之分解放出氨,借蒸汽将氨蒸至酸液中,根据此酸液被中和
的程度可计算得样品之氮含量。若以甘氨酸为例,其反应式如下:
CH2COOH
| +3H2SO4 → 2CO2 + 3SO2 +4H2O +NH3 (1)
NH2
2NH3 +H2SO4 →(NH4)2SO4 (2)
(NH4)2SO4 + 2NaOH → 2H2O+Na2SO4 +2NH3 (3)
反应(1)、(2)在凯氏瓶内完成,反应(3)在凯氏蒸馏装置中进行。
为了加速消化,可以加入 CuSO4 作催化剂,K2SO4 以提高溶液的沸点。收集氨可
用硼酸溶液,滴定则用强酸。实验和计算方法这里从略。
计算所得结果为样品总氮量,如欲求得样品中蛋白含量,应将总氮量减去非蛋
白氮即得。如欲进一步求得样品中蛋白质的含量,即用样品中蛋白氮乘以即
得。
五种蛋白质测定方法比较如下:
方法灵敏度时间原理干扰物质说明
凯氏定氮法灵敏度低, 费时将蛋白氮转化非蛋白氮用于标准蛋白
(Kjedahl 法适用于 ~ 8-10 为氨,用酸吸(可用三***质含量的准确
) 氮,误小时收后滴定乙酸沉淀蛋测定;干扰少;
差为±2% 白质而分费时太长
离)
双缩脲法灵敏度低中速多肽键+碱性硫酸铵; 用于快速测
(Biuret 法) 1~20mg 20~30 Cu2 + →紫色 Tris 缓冲定,但不太灵
分钟络合物液;某些氨敏;不同蛋白
基酸质显色相似
紫外吸收法较为灵敏快速蛋白质中的酪各种嘌吟和用于层析
50~100μg 5~10 氨酸和色氨酸嘧啶; 柱流出液的检
分钟残基在 280nm 各种核苷酸测;核酸的吸
处的光吸收收可以校正
Folin - 酚灵敏度高慢速双缩脲反硫酸铵; 耗费时间长;
试剂法~5μg 40 ~ 应;磷钼酸- Tris 缓冲操作要严格计
(Lowry 法) 60 分磷钨酸试剂被液; 时;
钟 Tyr和 Phe还原甘氨酸; 颜色深浅随不
各种硫醇同蛋白质变化
考马斯亮蓝灵敏度最高快速考马斯亮蓝染强碱性缓冲最好的方法;
法 1~5μg 5~15 料与蛋白质结液; 干扰物质少;
(Bradford 分钟合时,其λmax TritonX- 颜色稳定;
法) 由 465nm 变为 100; 颜色深浅随不
595nm SDS 同蛋白质变化
二、双缩脲法(Biuret 法)
(一)实验原理
双缩脲(NH3CONHCONH3)是两个分子脲经 180℃左右加热,放出一个分子氨后
得到的产物。在强碱性溶液中,双缩脲与 CuSO4 形成紫色络合物,称为双缩脲反应。
凡具有两个酰***基或两个直接连接的肽键,或能过一个中间碳原子相连的肽键,这
类化合物都有双缩脲反应。
H2O
O=C C=O
HN NH
R-CH CH-R
O=C Cu C=O
HN NH
R-CH CH-R
H2O
紫色络合物
紫色络合物颜色的深浅与蛋白质浓度成正比,而与蛋白质分子量及氨基酸
成分无关,故可用来测定蛋白质含量。测定范围为 1~10mg 蛋白质。干扰这一测定的
物质主要有:硫酸铵、Tris 缓冲液和某些氨基酸等。
此法的优点是较快速,不同的蛋白质产生颜色的