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小鼠实验性缺氧实验报告.docx

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小鼠实验性缺氧实验报告.docx

上传人:rsqcpza 2019/2/19 文件大小:25 KB

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小鼠实验性缺氧实验报告.docx

文档介绍

文档介绍:小鼠实验性缺氧实验报告\ 实验三实验性缺氧【实验目的】 ,了解缺氧的分类。 ; ,理解条件因素在缺氧发病中的重要性。 。 。【实验原理】导致低张性缺氧最常见的原因包括吸入气氧分压过低和外呼吸功能障碍。本实验将小鼠放置于加入钠石灰的密闭广口瓶内,随着小鼠的呼吸消耗,广口瓶中氧气含量逐渐降低,模拟外环境氧分压过低引起的低张性缺氧。观察低张性缺氧时机体的变化及存活时间。影响机体对缺氧耐受性的因素很多,除缺氧时间、速度、类型和程度外,还与缺氧时中枢功能状态和年龄等因素有关。本实验通过应用药物改变小鼠的中枢兴奋状态及选择不同年龄的小鼠,观察不同条件下低张性缺氧小鼠的活动状况和存活时间。血液性缺氧是由于血红蛋白的数量减少或性质改变从而降低血液携氧能力或血红蛋白结合的氧不易释出所引起的缺氧。本实验将复制两种常见血液性缺氧模型:一氧化碳中毒和亚***盐中毒引起的血液性缺氧。一氧化碳可与血红蛋白结合,形成碳氧血红蛋白而失去结合氧的能力,从而导致血液携氧能力降低而引起机体缺氧。亚***钠是强氧化剂,可使血红蛋白分子内二价Fe2+氧化成为三价Fe3+而形成高铁血红蛋白,高铁血红蛋白同样失去携氧能力而引起血液性缺氧。【实验对象】成(转载于:写论文网:小鼠实验性缺氧实验报告)年小鼠、新生小鼠【实验药品和器材】%尼可刹米、%***丙嗪、生理盐水、钠石灰、5%亚***钠、1%亚甲兰、浓硫酸、草酸。缺氧瓶带气压平衡装置、耗氧量测定装置、1ml注射器、5ml注射器、电子天平、纱布、滤纸、眼科剪、眼科镊、小烧杯、酒精灯、火柴、CO发生装置、气囊袋。 1 【实验步骤】 ,称重后分别放入盛有钠石灰的两个缺氧瓶中,A瓶不盖胶塞,暴露于空气中,B瓶用胶塞塞紧瓶口。比较观察2只小鼠的活动状况、皮肤黏膜和肝脏颜色、呼吸频率和深度,记录小鼠出现抽搐的时间及存活时间。通过耗氧量测定装置测量低张性缺氧的小鼠耗氧量。计算耗氧率。当B瓶小鼠死亡后,将A瓶中小鼠断颈处死,解剖2只小鼠腹腔,取出小鼠肝脏组织,置于标记的白色滤纸上,比较观察肝脏的颜色。 (1)取成年小鼠和新生幼鼠各1只,将2只小鼠分别放入缺氧瓶内,盖上胶塞。(2)观察小鼠的活动状况、皮肤黏膜和肝脏颜色、呼吸频率和深度,记录小鼠出现抽搐的时间及存活时间。 2 (1)取成年小鼠3只,称重并标记编号后分别作如下处理:A组小鼠腹腔注射%尼可刹米溶液ml/10g;B组小鼠腹腔注射%***丙嗪溶液ml/10g;C组小鼠腹腔注射生理盐水ml/10g。(2)腹腔注射结束后迅速将3只小鼠放入缺氧瓶中,盖上胶塞; (3)比较观察3只小鼠的活动状况、皮肤黏膜和呼吸频率和深度,记录小鼠出现抽搐的时间及存活时间。表二、不同中枢状态对低张性缺氧耐受性的影响 ,再加入浓硫酸2~3ml,塞紧试管。点燃酒精灯置试管下缓慢加热可见试管内有气泡产生即可,将CO发生装置连接气囊袋收集产生的CO备用。取成年小鼠2只,分别将其放入缺氧瓶中,观察其正常表现后,用注射器从气囊袋中抽取5mlCO注入一缺氧瓶中,并迅速盖上胶塞,另一缺氧瓶不盖胶塞。观察小鼠的活动状况、皮肤黏膜和呼吸频率和深度, 当小鼠出现抽搐时立即取出小鼠并迅速置通风处,观察小鼠各项指标是否恢复。若指标恢复,继续将小鼠放回缺氧瓶中盖上胶塞直至死亡,记录存活时间。解剖CO中毒小鼠的肝脏,观察记录其颜色变化。 ***钠中毒性缺氧取成年小鼠2只,称重,观察其正常表现后,腹腔均注射5%亚***钠溶液/10g后,一只小鼠立即腹腔注射1%亚甲兰ml/10g,另一小鼠立即腹腔注射生理盐水ml/10g。观察小鼠的活动状况、皮肤黏膜和呼吸频率和深度, 并记录小鼠存活时间。解剖亚***盐中毒小鼠的肝脏,观察记录其颜色变化。 3 表三、血液性缺氧小鼠各项指标变化【实验注意事项】复制低张性缺氧时,要求缺氧瓶必须密闭,必要时可在瓶口涂上凡士林达到密闭效果。各组小鼠体重要求接近,体重差不得超过4g。小鼠腹腔注射时应从左下腹斜向上进针,以免导致肝脏损伤,同时也可避免将药液注入肠管、膀胱和血管内。复制CO中毒性缺氧时CO注射量不宜过多,以免动物迅速死亡而致血液颜色变化不明显,影响结果观察。给动物注射亚甲蓝的剂量要求适当,剂量过少达不到抢救NaNO2中毒的目的;剂量过大反而会加重NaNO2的中毒作用。 CO是毒性较强的气体,实验过程中要注意防护。建议实验室窗户打开通风。【思考题】低张性缺氧时小鼠的呼吸、口唇皮肤粘膜