文档介绍：蒄实验八聚丙烯酰***凝胶圆盘电泳螁【实验目的】***凝胶电泳的基本原理。******凝胶电泳的操作技术,用于分离蛋白质。芆【实验原理】袄艿CH2=CH聚丙烯酰***凝胶电泳是以聚丙烯酰***作为支持物的一种电泳形式。单体-丙烯酰***和交联剂-甲叉双丙烯酰***相互作用可形成聚丙烯酰***,该聚合反应以TEMED(四***乙***)作为催化剂,以APS作为引发剂。丙烯酰***和甲叉双丙烯酰***的比例可决定凝胶网孔的大小,交联剂所占比重越大,凝胶的网孔就越小。薈蚄C=O薃NH2荿C=O罿NH莅CH2莂C=O葿NH莀CH2=CH袃+莄AP蕿TEMED蒆NH莇CH2羆C=O蒁NH虿CH2—CH聿C=O螄NH2薁—CH2—CH肀C=O薇NH2蒃—薁CH2—CH—蒁C=O艿NH2薆—CH2—CH蚀C=O蚈NH2蚇—芅丙烯酰***螀甲叉双丙烯酰***聿聚丙烯酰***葿肄膄CH2=CH蒀袇肇膄袁蕿袆芄节—CH2—CH—肆蚅莄C=O莈螈莃蒄蝿芆蒆CH2—CH—薄膀羈膅蚄芇利用聚丙烯酰***凝胶电泳进行蛋白质分离主要依据以下两个因素:膂蛋白质所带静电荷:在不同的pH条件下蛋白质所带电荷不同。在一定的电场条件下蛋白质将向与其所带电荷相反的电极方向移动,移动速率取决于蛋白质表面电荷的数量,电压越强或电荷越多则蛋白质移动的越远。其次,蛋白质的形状和大小:蛋白质在电泳中所受的阻力主要取决于样品的大小与凝胶网孔大小之间的关系。蛋白质分子越小或凝胶网孔越大,所分离样品所受阻力就愈小,则在电场中的迁移率就越大。在非变性电泳中,天然蛋白质的分离就是蛋白质所带电荷、分子大小及分子形状等因素共同影响,作用的结果。螀葿电压x样品静电荷蒄迁移率= 袄葿蕿摩擦力袅浓缩效应可显著提高聚丙烯酰***凝胶电泳的分辨率,该效应可通过引入浓缩胶和不连续缓冲溶液系统而获得。浓缩胶处于分离胶的顶部,因此样品在进入分离胶之前首先要经过浓缩胶。它是由较低浓度的丙烯酰***构成,当样品经过浓缩胶时由于胶内网孔较分离胶网孔大,样品的移动速度较快,最终使样品“堆积”在浓缩胶和分离胶之间。节另外,浓缩胶还具有比分离胶更低的pH。浓缩胶内的缓冲溶液是Tris-HCl(),该pH远低于Tris的pK值()。-HCl,-甘氨酸缓冲溶液。在浓缩胶中,小分子并带有大量负电荷的Cl-在凝胶中的移动速率较快,而电荷较少且分子量较大的甘氨酸的移动速率较慢。由于二者在同一电场中,具有相同的电流,由此形成的电压梯度导致甘氨酸离子始终跟随在Cl-的后面,带有负电荷的蛋白质样品则浓缩在甘氨酸离子和Cl-之间向正极移动。,甘氨酸的解离度增加,在电场中的迁移率高于样品,蛋白质不再夹于两种离子之间向正极移动,这时的蛋白质依靠分子筛效应和电荷效应进行分离。薂虿芆样品缓冲溶液羃Tris/-蒁+聿蝿Tris//【实验材料】-Rad公司Mini-ProteanⅡ型电泳仪;电源(电压200V,电流500mA);100℃沸水浴;Eppendorf管;微量注射器(50μl或100μl);带盖的玻璃或塑料小容器;摇床。******(Acr)30g薃甲叉丙烯酰***(Bis)***乙二***(TEMED)螀肇5蒅浓缩胶缓冲溶液1mol/LHCl48ml莃三羟******,-%乙醇后,:蛇毒干粉200mg溶于20ml,(5)中,再加入25%蔗糖20ml和溴酚蓝(8)10ml螂螁凝胶溶液的配方荿试剂袅分离胶(ml)膃浓缩胶(ml)-袇-(ml)蕿10肆10羂Aa浓度(g%)【实验操作】***取l0cm×,选择较平整的一端为底端,、8cm两处,画线;底端管口用小块胶布封口,插入橡皮垫中,垂直放