文档介绍：实验一动物细胞的传代培养一、。、实验原理细胞培养(cellculture)是指从机体内取出某种组织或细胞,模拟机体内的生理条件使其在体外生存、生长和繁殖的过程。细胞的体外培养在细胞生物学和医学研究领域有着极为广泛的用途,这一技术已成为研究细胞生理、细胞增殖、细胞遗传、细胞癌变和细胞工程等课题的一项不可缺少的手段。细胞培养技术的突出优点在于能为研究者提供大量的生物性状相同的细胞作为研究对象,便于人们在体外利用各种不同的方法从不同的角度研究细胞生命活动的规律。此外,利用细胞培养技术还可使人们较为方便地研究各种物理、化学和生物因素对细胞结构和功能的影响。细胞培养可分为原代培养和传代培养2种情况。所谓原代培养(primaryculture)是指直接从机体取出组织或细胞后所进行的首次培养。而传代培养(subculture)是指当原代培养的细胞增殖到一定密度后,将其从原培养容器中取出,以1:2或其他比例转移到另一个或几个容器中所进行的再培养。传代培养可简称传代。在体外培养过程中,要使细胞能正常地生长、繁殖,需经常对其进行传代。传代的累积次数就是细胞的代数。在从事细胞培养工作时常常会接触到细胞系(cellline)和细胞株(cellstrain)这两个容易混淆的概念。通常认为,细胞系指通过原代培养并经传代后所形成的细胞群体,由于细胞系来源于原代培养,而原代培养物中所含的细胞种类较多,故一个细胞系往往由多个生物学性状不同的细胞群体所组成,而细胞株是利用单细胞分离培养法或克隆形成法从原代培养物或细胞系中选择出的细胞群体,一个细胞株往往具有特殊的生物学性状或标记并可持续存在。细胞培养是一种程序复杂、条件较多且要求严格的实验性工作。由于细胞在体外的生长、繁殖会受到温度、营养物质、酸碱度、渗透压及微生物等多种因素的显著影响,故细胞培养工作的各个环节如培养器皿清洗消毒、营养液配制和除菌、pH值调整、温度调节等操作都有严格的要求和规定,尤其要注意无菌操作,这是细胞体外培养成败的关键。三、实验材料人肝癌细胞株HepG2四、实验器材CO2恒温培养箱、超净工作台、恒温水浴箱、倒置相差显微镜、电热高压蒸汽消毒锅、细胞培养瓶、培养皿、吸管、除菌滤器、小烧杯、100mL玻璃试剂瓶、橡皮瓶塞、酒精灯、记号笔。五、:用天平称取DMEM培养基粉剂(质量依实验所需培养液的总量而定)倒入烧杯中,按说明书要求加入三蒸水、NaHCO3、谷氨酰***,利用磁力搅拌器使加入的固体物完全溶解,然后加入适量浓度为20000单位/mL的青霉素和链霉素,使培养液中这两种抗菌素的浓度分别达到100单位/L。再按比例加入胎牛血清,使其在培养液中的含量达到20%,将溶液充足混匀,用5%-。。(不含钙镁,):、、、,加三蒸水溶解并定容至1000mL。-Hanks液;①D-Hanks原液:、、、、,加三蒸水溶解至l000mL。配制时要注意按顺序逐一加入溶解,应等前一种药品完全溶解后再加下一种药品,原液配好后应分装于250mL或500mL玻璃瓶中,高压灭菌,置冰箱内贮存。②D-Hanks工作液:取D-Hanks原液l00mL,加三蒸水896mL,%的酚红溶液4mL混合均匀即成。%胰蛋白酶(-):称取活性为1:,另准备D-Hanks工作液100mL。先用少量D-Hanks工作液将胰蛋白酶粉调成糊状,再将剩余的D-Hanks工作液全部加入,充足搅拌使酶充足溶解,必要时可将容器置于36℃恒温水浴箱中,直至酶液清亮,-。然后用玻璃滤器除菌,分装于灭菌后的EP管中,密封后置冰箱冷冻室(-18℃)中贮存。六、实验方法(一):实验中所需的玻璃器皿(如培养瓶、离心管、吸管、小瓶等)和器械(如剪刀、镊子等)应彻底清洗干净,干燥后用牛皮纸包好置高压蒸汽消毒锅中消毒灭菌(蒸汽压力为103kPa,20min)。而培养液、PBS液、胰蛋白酶液、PBS液等应利用抽滤法除菌。将已消好毒的实验所需物品收集并清点好置于超净工作台内,避免实验开始后再从工作台外取物而受污染。为操作时方便,工作台内的用品应合理布局,原则是右手使用方便的用品放在右侧,左手使用方便的用