大肠杆菌感受态细胞的制备.ppt

文档介绍：大肠杆菌感受态细胞的制备
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实验目的
1. 熟悉感受态细胞制备原理。
2. 掌握大肠杆菌感受态细胞制备的方法。
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实验原理
在自然条件下,很多质粒都可通过细菌接合作用转移到新的宿主内，但在人工构建的质粒载体中,一般缺乏此种转移所必需的基因，因此不能自行完成从一个细胞到另一个细胞的接合转移。如需将质粒载体转移进受体细菌，需诱导受体细菌产生一种短暂的感受态以摄取外源DNA。经一定的理化方法诱导后，处于适于摄取和容纳外源DNA的细胞，称为感受态细胞。
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目前，制备感受态细胞已成为基因操作的常规技术。感受态细胞:原核细胞或真核细胞。
特点：
细胞的通透性在制备过程中增强使其易于接受外源基因。
细胞本身应为修饰、限制酶缺陷的菌株，使外源DNA分子不易被切除或破坏。
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制备感受态细胞可以使用电击法或化学法。
电击法是利用瞬时高压电流处理细胞悬浮液，使细胞膜发生去极化，产生微孔，悬液中的核酸就可通过微孔进入细胞。电击转化需要仪器帮助
化学法则更加简便，尤其适用于原核细胞感受态制备。
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大肠杆菌感受态制备：
RuCl法
CaCl2法
其原理是细胞在低温，低渗CaCl2（）作用下，会发生膨胀，Ca2+使细胞膜磷脂双分子层形成液晶结构，促使细胞外膜与内膜间隙中的部分核酸酶解离开来，诱导细胞成为感受态细胞。转化时混合物中的DNA形成抗DNA酶的羟基-钙磷酸复合物粘附于细胞表面，通过热刺激，液晶态细胞膜表面产生裂隙，使外源DNA进入细胞。
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操作步骤
细菌接种与培养
取-70℃冰冻大肠杆菌DH5α菌种，用划线法接种细菌于培养皿，做好标记，于37℃培养过夜。第二天，从平板上挑取单个菌落，接种至含有3ml LB培养液的试管中，37℃振荡培养过夜。次日取菌液30 μL接种至含有3 ml LB培养基的试管中，37℃剧烈震荡培养约2~3小时（200~300r/min）。
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菌体收集
当菌落600nm ~，将试管取出放置冰上10~15分钟。在无菌条件下，。4℃,5000rpm离心5min。弃上清，将管倒置于干滤纸上1min，吸干残留的培养液。
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制备感受态
(1)加200 μL CaCl2到离心管中，振荡混匀，使菌体悬浮，冰浴30min。
(2) 4℃,5000rpm离心5分钟，弃上清，将管倒置于干滤纸上，吸干残留液体。
(3) 加50 ，重悬浮菌体，放至4℃保存备用，24~48小时内使用效果较好。如果暂时不用，可加入等体积的 30%的甘油（甘油终浓度为15%），混匀。液氮速冻后保存于-80℃低温冰箱中待用，可保存半年以上。
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