文档介绍：RNA试剂盒所含药品：
Component
CW0559S 50 preps
DNase I（DNA酶Ⅰ）
1000 U
10×Reaction Buffer（10×缓冲液）
1000 μl
Buffer RL
35 ml
Buffer RLC
35 ml
Buffer RW1
40 ml
Buffer RW2（concentrate）
11 ml
RNase-Free Water（无RNA酶的水）
10 ml
Spin Columns FL with Collection Tubes（含收集管的吸附柱FL）
50
Spin Columns RM with Collection Tubes（含收集管的吸附柱RM）
50
RNase-Free Centrifuge Tubes（ ml）（无RNA酶的离心管）
50
自备试剂：
β-巯基乙醇、无水乙醇（新开封或提取RNA专用）。
实验前准备及重要注意事项：
1．预防RNase污染，应注意以下几方面：
1）使用无RNase的塑料制品和枪头，避免交叉污染。
2）配制溶液应使用无RNase的水。
3）操作人员戴一次性口罩和手套，实验过程中要勤换手套。
2．预防RNase污染，应注意以下几方面：
1）使用无RNase的塑料制品和枪头，避免交叉污染。
2）玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时， M NaOH中浸泡10分钟，用水彻底冲洗后高压灭菌。
3）配制溶液应使用无RNase的水。
4）操作人员戴一次性口罩和手套，实验过程中要勤换手套。
3．提取的样品避免反复冻融，否则影响RNA提取的量和质量。
4．Buffer RL在使用前请加入β-巯基乙醇，1 ml Buffer RL加10 μl β-巯基乙醇。加入β-巯基乙醇的Buffer RL室温可保存1个月。Buffer RLC使用时不需加β-巯基乙醇。
5．第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明先在Buffer RW2中加入无水乙醇。
6．Buffer RL和Buffer RLC如果产生沉淀，请加热使其溶解后室温放置。
7．所有离心步骤均在室温下进行，且所有操作步骤动作要迅速。
操作步骤
1．50-100 mg植物组织在液氮中迅速研磨成粉末，加入600 μl Buffer RL（使用前检查是否加入β-巯基乙醇）或Buffer RLC。涡旋振荡使其充分裂解。 注意：1）Buffer RL主要成分为异硫***酸胍，适用于大多数植物组织的裂解。但有些植物组织（如玉米的胚乳），由于次级代谢产物较特殊，异硫***酸胍使样品产生沉淀，导致RNA提取效果不佳， 此时可加入Buffer RLC替代Buffer RL。2）56℃孵育1-3分钟有助于组织的裂解，但是淀粉含量高的植物不要进行高温孵育。
2．将步骤1所得全部液体转移至已装入收集管的吸附柱(Spin Columns FL)中，12,000 rpm （~13,400×g）离心2分钟，将收集管中的上清液转移到一个新的离心管（自备）中。
注意：1）在吸取液体时可以将枪头尖端剪掉，便于取样。 2）Spin Columns FL可以除去大部分的碎片，但仍会有小部分流出，离心后会在收集管内形成沉淀，在进行下一步时注意