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细胞器分离.ppt

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细胞器分离.ppt

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细胞器分离.ppt

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文档介绍

文档介绍:细胞器分离
第1页,本讲稿共25页
将动植物组织制成匀浆,在适当的悬浮介质中用差速离心法可以分离细胞线粒体。在一定的离心场中(选用离心机的一定转速),球心颗粒的沉降速度取决于它的密度、半径和悬浮介质的黏度。在一均匀悬浮介质中线粒体) 上清液(弃去)
洗涤
mol/L蔗糖溶液10 mL,10000×g离心10 min
沉淀(纯化的线粒体) 上清液(弃去)
第13页,本讲稿共25页
3.活性鉴定:
(1) 细胞核:取核沉淀1滴涂于载玻片,加入Carnoy固定液15 min,晾干。Giemsa染液染10 min,蒸馏水漂洗数秒,用滤纸吸干水、用显微镜(40×)检查,细胞核呈紫红色,混杂的胞质为浅蓝色碎片。
(2) 线粒体: 取线粒体沉淀滴在载玻片上,勿太密。滴加1%詹钠斯绿溶液染液,10 min后用光学显微镜观察,线粒体蓝绿色,呈小棒状或哑铃状。
第14页,本讲稿共25页
玉米线粒体的分离
从植物细胞分离线粒体,除了作线粒体功能测定外,在植物细胞遗传工程中,常用于分离核外基因—线粒体DNA等目的。
分离线粒体的方法仍采用均匀介质中的差速离心。/L甘露醇代替。EDTA整合二价阳离子,Ca2+除去后细胞间粘着解体,促使组织分散成单个细胞。牛血清白蛋白(BSA)能包在细胞外面,并作为竞争性底物削弱蛋白酶的作用。
第15页,本讲稿共25页
【材料】
玉米黄化幼苗(水稻、高粱等幼苗均可)。
【实验用品】
1.试剂:
(1)分离介质:,50mmol/L的Tris-盐酸缓冲液(),3mmol/LEDTA,(BSA)。
50mmol/L的Tris-Hcl缓冲液()配法:***氨基甲烷(Tris)溶液与42mL ,加水稀释至100mL。
第16页,本讲稿共25页
(2)保存液:()
(3)20%次***酸钠(NaClO)溶液。
(4)1%詹纳斯绿B染液,用生理盐水配制。
2.器材:温箱、冰箱、纱布、瓷研钵、冷冻控温高速离心机。
第17页,本讲稿共25页
【实验步骤】
1.玉米种子用20%次***酸钠溶液浸泡10min消毒,清水冲洗30min,再浸泡清水15h。将种子平铺在放有湿纱布的盘内,保持湿度,置温箱28℃于暗处培育2~3d。待芽长到1~2cm长时剪下约15g,放0~4℃1h。
2.加3倍体积分离介质,在瓷研钵内快速研磨成匀浆。
3.用多层纱布过滤,滤液经700×g离心10min。除去核和杂质沉淀。
4.取上清液10000×g离心10min,沉淀为线粒体。再同上离心洗涤一次。
5.沉淀为线粒体,。注意以上匀浆化及离心均控制在0~4℃进行。
6.线粒体的观察:取线粒体沉淀涂在清洁的载玻片上,不待干立即滴加1%詹纳斯绿B染色20min,放上盖玻片,用显微镜观察,线粒体是蓝绿色圆形颗粒。
第18页,本讲稿共25页
【注意事项】
实验全过程要求在0℃~4℃进行,如果使用非冷冻控温的离心机,一般只宜分离细胞核和线粒体,同时注意使样品保持冷冻;尽可能充分破碎组织、缩短匀浆时间。整个分离过程不宜过长。
【实验报告】
绘制线粒体示意图。
第19页,本讲稿共25页
II 叶绿体的分离与荧光观察
【目的】
了解叶绿体分离的一般原理和方法,并熟悉应用荧光显微镜方法观察叶绿体荧光现象。
【原理】
叶绿体是植物细胞中较大的一种细胞器,能发生特有的能量转换。利用低速离心机可以分离叶绿体,其分离在等渗溶液(0.35 mol/L***化钠或0.4 mol/L蔗糖溶液)中进行,目的是为了防止渗透压的改变引起叶绿体的损伤。将匀浆液在1000 r/min离心,去除其中的组织残渣和一些未被破碎的完整细胞,然后,3000 r/min离心,可获得沉淀的叶绿体(混有部分细胞核)。在室温下进行分离要迅速。
第20页,本讲稿共25页
某些物质在一定短波长的光(如紫外光)的照射下吸收光能进入激发态,从激发态回到基态时,就能在极短的时间内放射出比照射光波长更长的光(如可见光),这种光就称为荧光。若停止供能荧光现象立即停止。有些生物体内的物质受激发光照射后,可直接发出荧光(称为自发荧光),如叶绿素的火红色荧光。有的生物材料本身不发荧光,但它吸收荧光染料后同样也能发出荧光(称为间接荧光),如叶绿体吸附吖啶橙后可发橘红色荧光。本实验利用荧光显微镜对发荧光的叶绿体进行观察。
第21页,本讲稿