文档介绍：DB43/T 432-2009
DB43/T 432-2009
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淡水生物资源调查技术标准
1　范围
本标准规定了浮游植物和浮游动物采样、样品保存、定性及定量分析方法，着生生物的定性调水深3m～6m时，在表层、底层采样，，；水深6m～10m时，在表层、中层、底层采样；水深大于10m时，在表层、5m、10m水深层采样，10m以下处除特殊需要外一般不采样。
　浮游动物采样
由水体的深度决定，、1m或2m取一个水样加以混合，然后取一部分作为浮游动物定量之用。
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　采样频次和采样时间
采集次数依研究目的而定，采样次数可逐月或按季节进行，一般按季节进行。样品瓶必须贴上标签，标明采集时间、地点。
采样时间尽量保持一致，一般在上午8：00～10：00进行。
　采样方法
　浮游植物采样
定量样品在定性采样之前用采水器采集，每个采样点取水样1L，贫营养型水体应酌情增加采水量。泥沙多时需先在容器内沉淀后再取样。分层采样时，取各层水样等量混匀后取水样1L。大型浮游植物定性样品用25号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集，注意网口与水面垂直，网口上端不要露出水面。
　浮游动物采样
原生动物、轮虫和无节幼体定量可用浮游植物定量样品，如单独采集取水样量以1L为宜；定性样品采集方法同浮游植物。
枝角类和桡足类定量样品应在定性采样之前用采水器采集，每个采样点采水样10L～50L，再用25号浮游生物网过滤浓缩，过滤物放入标本瓶中，并用滤出水洗过滤网3次，所得过滤物也放入上述瓶中；定性样品用13号浮游生物网在表层缓慢拖曳采集。注意过滤网和定性样品采集网要分开使用。
　样品的固定
浮游植物样品立即用鲁哥氏液固定，用量为水样体积的1％～％。如样品需较长时间保存，则需加入37%～40％甲醛溶液，用量为水样体积的4％。
原生动物和轮虫定性样品，除留一瓶供活体观察不固定外，固定方法同浮游植物。枝角类和桡足类定量、定性样品应立即用37%～40％甲醛溶液固定，用量为水样体积的5％。
　水样的沉淀和浓缩
固定后的浮游植物水样摇匀倒入固定在架子上的1L沉淀器中，2h后将沉淀器轻轻旋转，使沉淀器壁上尽量少附着浮游植物，再静置24h。充分沉淀后，用虹吸管慢慢吸去上清液。虹吸时管口要始终低于水面，流速、流量不能太大，沉淀和虹吸过程不可摇动，如搅动了底部应重新沉淀。吸至澄清液的1/3时，应逐渐减缓流速，至留下含沉淀物的水样20mL～25〔或30～40〕mL，放入30〔或50〕mL的定量样品瓶中。用吸出的少量上清液冲洗沉淀器2次～3次，一并放入样品瓶中，定容到30〔或50〕mL。如样品的水量超过30〔或50〕mL，可静置24 h后，或到计数前再吸去超过定容刻度的余水量。浓缩后的水量多少要视浮游植物浓度大小而定，正常情况下可用透明度作参考,依透明度确定水样浓缩体积见表3，浓缩标准以每个视野里有十几个藻类为宜。
表3　依透明度确定水样浓缩体积
透明度〔cm〕
1L 水样浓缩后的水量〔mL〕
＞100
30～50
50～100
100～50
30～50
500～100
20～30
1000〔不浓缩〕
＜20
＞1000〔稀释〕
原生动物和轮虫的计数可与浮游植物计数合用一个样品；枝角类和桡足类通常用过滤法浓缩水样。
　种类鉴定
优势种类应鉴定到种，其它种类至少鉴定到属。种类鉴定除用定性样品进行观察外，微型浮游植物需吸取定量样品进行观察，但要在定量观察后进行。
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　计数
　浮游植物计数
　计数框行格法
计数前需先核准浓缩沉淀后定量瓶中水样的实际体积，可加纯水使其成30mL、50mL、100mL等整量。然后将定量样品充分摇匀，〔面积20mm×20mm〕。盖上盖玻片后，在高倍镜下选择3行～5行逐行计数，数量少时可全片计数。
1L水样中的浮游植物个数〔密度〕可用以下公式计算：
　　　　　　　　　　　　　　　………………………………………………〔1〕
式中:
N——1L水样中浮游生物的数量，个/L；
N0——计数框总格数；
N1——计数过的方格数；
V1——1L水样经浓缩后的体积，mL；
V0——计数框容积，mL；
Pn——计数的浮游植物个数。