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实验动物学实验报告
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实验一:小鼠实验
一、实验目得1、掌握小动，回抽针栓，如无回血、肠液与尿液后即可注射药液。
5 ）尾静脉注射给药
鼠尾静脉有两根，左右两侧各一根、操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用45~50C得温水浸润半分钟或用洒精擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指与食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用中指从下面托起尾巴，以无名指与小指夹住尾巴得末梢，右手持注射器，使针头与静脉平行（小于30C），从尾下四分之一处（约距尾尖2—3厘米）处进针，此处皮薄易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽可能从末端开始，以后向尾根部方向移动注射。动进入注射器。
6、小鼠得解剖
将小鼠放在解剖盘上用大头针将四肢固定在解剖盘上。用洒精棉球将小鼠腹部得皮肤消蠹。用手术剪沿腹中线将小鼠得腹部与胸部得皮肤剪开，然后用手术剪将腹腔与胸腔剪开，仔细观察小鼠腹腔与胸腔得各内脏器官。
内部脏器观察1）肺:分左右两叶，右肺分为四叶，左肺为一整叶。
2）心脏:呈圆锥状,位于近胸骨端，心尖位于第四肋问。
3 ）肝:附于隔上，呈暗褐色，分5叶。
4）胃:分贲门、幽门、胃底及胃体、5）肠:分小肠与大肠。小肠包括回肠、空肠与十二指肠。
6 ）脾:脾斜卧在胃得左侧，呈暗红色,长条扁平状。
7）胰:在十二指肠附近，呈粉红色。
8）肾:右肾比左肾位置稍高，肾脏前方有肾上腺，每肾内侧各有一根输尿管，开口于膀胱背侧。
1. 9）卵巢与子宫：卵巢形似绿豆状，粉红色，左右各一，位于肾脏下方。小鼠为双角子宫，为Y字形、10）睾丸:小鼠睾丸有一对，幼年时睾丸位于腹腔内，性成熟后则下降至阴囊内实验二:大鼠实验一、实验目得1、掌握大鼠抓取、固定得基本方法；2、掌握大鼠得雌雄鉴别方法；3、掌握大鼠得标记方法；4、掌握大鼠得基本采血技术（尾静脉采血、心脏采血、腹主动脉采血）;5、掌握大鼠得常用给药方法（灌胃、腹腔注射、尾静脉注射、皮下注射、皮内注射、麻醉）；6、掌握大鼠得解剖方法，熟悉内部脏器得自然位置；二、实验材料1、实验动物：每组SD大鼠2只（1雌1雄）；2、实验器械及试剂：鼠笼、大鼠固定器、大鼠固定板、1ml注射器、5m1注射器、眼科剪、弯头镶、灌胃针、10%水合***醛、生理盐水；三、实验内容及步骤抓取与固定
右手从鼠笼将大鼠尾巴上段抓住并提起，放在鼠笼上部、轻轻向后拉鼠尾，大鼠向前挣脱时用左手拇指与食指抓住两耳后与劲部大部分皮肤。其余手指及掌心夹住背部与尾部，将大鼠尾巴钩绕于小指上，将尾巴固定。注意不要用力过大使大鼠窒息死亡、性别鉴定
成年雄鼠得睾丸沉降至阴囊中，故其阴囊明显，成年雌鼠可见***开口与乳头幼鼠或仔鼠则主要从外***与肛门得距离判定犀性:距离长，毛发密（与其她部位一样）,雌性:距离短，毛发稀疏。
2. 给药
1）灌胃：将注射器装入药物溶液，装上灌胃针。抓取固定大鼠后，使大鼠头部朝上，从大鼠口角一侧进针，沿咽后壁缓缓插入食道。若感到巨大阻力或动物挣扎时,应立即停止进针或将针拔出，以免损伤或穿破食道以及误入气管、一般当灌胃针插入大鼠4〜5cm,常用得灌胃量大鼠为0、5~1ml;（若药物灌入肺中大鼠死亡）。
2）腹腔注射:左手固定大鼠后，右手持针,45度沿腹白线两侧进针，刺入腹肌,穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后有落空感、针头刺入皮肤后进针3nm左右,将注射针头朝上，减少与皮肤问得倾斜角度，继续进针、固定针头,保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液与尿液后即可注射药液。
3）尾静脉注射：鼠尾静脉有两根，左右两侧各一根、操作时先将动物固定在鼠筒内,使其尾巴露出，尾部用45~50C得温水浸润半分钟或用洒精擦拭使血管扩张并可使表皮角质软化，以左手拇指与食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用中指从下面托起尾巴，以无名指与小指夹住尾巴得末梢，右手持注射器，使针头与静脉平行（小于30C），从尾上三分之一处进针，此处皮薄易于刺入，回抽出血液后，表示针头已进入静脉，可缓慢将药物注入小鼠尾静脉中。注射完毕后用十棉球压迫尾部向注射以止血、如需反复注射，应尽可能从末端开始，以后向尾根部方向移动注射。（切勿从后3/1处注射，此处大鼠易发生断尾现象）。
4）皮下注射:将大鼠以俯卧位固定，将腹部皮肤去毛后，左手拇指与食指捏住腹部皮肤，右手持针沿纵轴方向刺入皮下，进针时感觉有阻力，继续刺入后突然阻力消失，判断针头可活动后注射入药液。注射成功后可见一个小丘状隆起，经过段