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针
时左手拇、食指捏住进针部位片刻，以防止药物外漏。
3）肌肉注射给药
小鼠体积小，肌肉少，很少采用肌肉注射。当给小鼠注射不溶于水而混悬于
油或其他溶剂中的药物时，采用肌肉注射。操作时 1 人保定小鼠，另一人用左手
抓住小鼠的 1 条后肢，右手拿注射器。将注射器与半腱肌呈 90°角迅速插入 1/4,
体重。
4）腹腔注射给药
左左手提起并固定小鼠，使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部，右手持注射器将
针头在下腹部靠近腹白线的两恻进行穿刺，针头刺入皮肤后进针 3nm 左右，接
着使注射针头与皮肤呈 45°角刺入腹肌，穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹
肌进入腹膜腔后抵抗感消失。固定针头，保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、
肠液和尿液后即可注射药液。
5）尾静脉注射给药鼠尾静脉有两根，左右两侧各一根。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧
杯中，使尾巴露出，尾部用 45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩
张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用中
指从下面托起尾巴，以无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器，使针头与
静脉平行（小于 30℃），从尾下四分之一处（约距尾尖 2-3 厘米）处进针，此处
皮薄易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。
注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽可能从末端开始，
以后向尾根部方向移动注射。动进入注射器。
6、小鼠的解剖
将小鼠放在解剖盘上，用大头针将四肢固定在解剖盘上。用酒精棉球将小鼠
腹部的皮肤消毒。用手术剪沿腹中线将小鼠的腹部和胸部的皮肤剪开，然后用
手术剪将腹腔和胸腔剪开，仔细观察小鼠腹腔和胸腔的各内脏器官。
内部脏器观察
1）肺：分左右两叶，右肺分为四叶，左肺为一整叶。
2）心脏：呈圆锥状，位于近胸骨端，心尖位于第四肋间。
3）肝：附于隔上，呈暗褐色，分 5 叶。
4）胃：分贲门、幽门、胃底及胃体。
5）肠：分小肠和大肠。小肠包括回肠、空肠和十二指肠。
6）脾：脾斜卧在胃的左侧，呈暗红色，长条扁平状。
7）胰：在十二指肠附近，呈粉红色。
8）肾：右肾比左肾位置稍高，肾脏前方有肾上腺，每肾内侧各有一根输尿管，
开口于膀胱背侧。
9）卵巢和子宫：卵巢形似绿豆状，粉红色，左右各一，位于肾脏下方。小鼠为
双角子宫，为 Y 字形。
10）睾丸：小鼠睾丸有一对，幼年时睾丸位于腹腔内，性成熟后则下降至阴囊
内。实验二：大鼠实验
一、实验目的
1、掌握大鼠抓取、固定的基本方法；
2、掌握大鼠的雌雄鉴别方法；
3、掌握大鼠的标记方法；
4、掌握大鼠的基本采血技术（尾静脉采血、心脏釆血、腹主动脉采血）；
5、掌握大鼠的常用给药方法（灌胃、腹腔注射、尾静脉注射、皮下注射、皮内
注射、麻醉）；
6、掌握大鼠的解剖方法，熟悉内部脏器的自然位置；
二、实验材料
1、实验动物：每组 SD 大鼠 2 只（1 雌 1 雄）；
2、实验器械及试剂：鼠笼、大鼠固定器、大鼠固定板、1ml 注射器、5ml 注射
器、眼科剪、弯头镊、灌胃针、10%水合***醛、生理盐水；
三、实验内容及步骤
1. 抓取和固定
右手从鼠笼将大鼠尾巴上段抓住并提起，放在鼠笼上部。轻轻向后拉鼠尾，
大鼠向前挣脱时，用左手拇指和食指抓住两耳后和劲部大部分皮肤。其余手指及
掌心夹住背部和尾部，将大鼠尾巴钩绕于小指上，将尾巴固定。注意不要用力过
大使大鼠窒息死亡。
2. 性别鉴定
成年雄鼠的睾丸沉降至阴囊中，故其阴囊明显，成年雌鼠可见***开口和乳
头，幼鼠或仔鼠则主要从外***与肛门的距离判定，雄性：距离长，毛发密（和
其他部位一样），雌性：距离短，毛发稀疏。
3. 给药
1）灌胃: 将注射器装入药物溶液，装上灌胃针。抓取固