文档介绍：九、实验动物采血方法
实验研究中，经常要采集实验动物的血液进行常规检查或某些生物化学分
析，故必须掌握血液的正确采集、分离和保存的操作技术。
采血方法的选择，主要决定于实验的目的所需血量以及动物种类。凡用血量
血
当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，
然后浸在 45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（刀
或剪刀）割去尾尖 -，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采
血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收
集血液的方法同上。每鼠一般可采血 10 余次以上。小鼠每次可取血 ，大
鼠 ～。
大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。先将
鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用 7 号或 8 号注射针头，
刺入鼠尾静脉，拔出针头时即血滴出，一次可采集有 10～50mm3。如果长期反复
取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。
采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠
的颈部（大鼠采血需带上纱手套），应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指
轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持续接 7 号针头的 1ml 注射
器或长颈（3～4cm）硬质玻璃滴管（毛细管内径 -），使采血器与鼠面
成 45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转 180 度使斜面
对着眼眶后界。刺入浓度，小鼠约 2～3mm，大鼠约 4～5mm。当感到有阻力时即
停止推进，同时，将针退出约 -，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔
出，以防止术后穿刺孔出血。
若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换 好。
体重 20-25g 的小鼠每次可采血 -；体重 200-300g 大鼠每次可采血
-，可适用于某些生物化学项目的检验。
采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大（小）鼠的颈部皮肤，并作动
物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约 1/2-4/5的颈部前剪断，让血自由
滴入盛器。～;大鼠约 5-10ml。
鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困