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文档介绍:该【脂多糖对体外培养猪颗粒细胞增殖、凋亡和雌二醇分泌的影响 】是由【科技星球】上传分享,文档一共【17】页,该文档可以免费在线阅读,需要了解更多关于【脂多糖对体外培养猪颗粒细胞增殖、凋亡和雌二醇分泌的影响 】的内容,可以使用淘豆网的站内搜索功能,选择自己适合的文档,以下文字是截取该文章内的部分文字,如需要获得完整电子版,请下载此文档到您的设备,方便您编辑和打印。脂多糖对体外培养猪颗粒细胞增殖、凋亡和雌二醇分泌的影响??果双双,李辉,施振旦,马卫明*(,泰安271018;,南京210014)?脂多糖对体外培养猪颗粒细胞增殖、凋亡和雌二醇分泌的影响果双双1,李辉2,施振旦2,马卫明1*(,泰安271018;,南京210014)Summary:旨在探讨脂多糖(LPS)对猪颗粒细胞增殖、凋亡及雌二醇(E2)分泌的影响。采用不同浓度的LPS(0、500、1000和2000ng·mL-1)处理体外培养的猪颗粒细胞,并测定细胞增殖、凋亡及相关基因FN1、IGF2、IGFBP2、CyclinD1、CyclinD2和P27kip的表达,同时对E2的分泌及P450arom的表达进行检测。结果表明,1000或2000ng·mL-1LPS均可显著促进颗粒细胞增殖、抑制细胞凋亡、提高活细胞百分率(P<),IGF2、IGFBP2(P<),CyclinD1、CyclinD2(P<)的表达,抑制阻碍细胞周期的基因P27kip(P<)的表达,同时可以通过强烈抑制芳香化酶P450arom基因的表达(P<),显著抑制E2的分泌(P<)。综上表明,LPS可以促进颗粒细胞增殖并抑制细胞凋亡,同时抑制颗粒细胞分泌E2的功能。Key:颗粒细胞;LPS;细胞增殖;细胞凋亡;基因表达;E2内***化学本质是脂多糖(haride,LPS),是革兰阴性菌细胞壁的组成成分,也是医学上引起机体“发烧”的热源。LPS在细菌正常生活状态时并不释放,仅在细菌自溶或人工方法裂解菌体后才释放出来[1-2]。LPS在动物体内普遍存在,具有多种来源途径,如环境、饲料、消化道内细菌解体、患病、创伤、交配以及分娩过程等[3-5]。大多数内***感染在初期并无明显症状,随着时间延长,逐渐表现出不良反应[6-7]。LPS在生殖方面造成的不良影响主要表现为卵巢活动受到抑制、类固醇激素分泌能力下降、胚胎发育受阻、黄体机能降低、抑制胚胎着床和引发流产等[8-9],最终导致动物繁殖性能下降。在奶牛研究中,LPS可以通过影响动物下丘脑-垂体促性腺激素的释放而造成内分泌紊乱,最终抑制LH/FSH分泌的脉冲波并能够推迟或完全抑制排卵前高峰的出现[10-11],阻碍E2分泌并抑制排卵。LPS对动物繁殖活动的影响,也表现在卵泡发育的方面。如具有正常周期性卵巢活动的健康牛卵泡液中LPS含量很低,平均为(±)ng·mL-1,而患有子宫内膜炎、缺乏周期性卵巢活动的牛卵泡液中LPS含量很高,平均为(±112)ng·mL-1,·mL-1[12]。卵泡颗粒细胞在卵泡发育和排卵过程中起着极其重要的作用,其通过微绒毛与卵母细胞发生内分泌联系,并对后者提供营养支持。颗粒细胞通过不断增殖、分泌类固醇激素、分泌细胞外基质蛋白、血管生成因子、免疫和趋化因子,促进卵泡的生长、发育和成熟,并通过影响垂体促性腺激素的分泌进行卵泡的募集、选择和成熟排卵等[13]。有研究显示,当LPS作用于牛颗粒细胞时,能激活TLR-4并上调一系列炎症因子如IL-1β、IL-6和TNFα等的表达,同时抑制颗粒细胞E2的分泌[14-16]。LPS对动物繁殖性能的负面影响,除通过下丘脑和垂体的间接作用降低促性腺激素分泌之外[17],是否直接影响卵泡颗粒细胞增殖及其功能?为此本研究采用LPS直接处理离体培养的猪颗粒细胞的方法,通过测定细胞增殖、凋亡、相关基因表达及激素分泌水平等来阐明。~20头180日龄左右的健康商品母猪,采集卵巢置于37℃生理盐水中,2h内带回实验室。~3次,灭菌纱布拭干卵巢表面,选取直径>2mm的卵泡,用10mL注射器配10号针头抽取卵泡液(注意避开血管)。将收集的卵泡液置于37℃水浴中静置5~10min,收集上清离心,将收集到的细胞用PBS(Gibco)重悬两次。用DMEM/F12培养液(Gibco)重悬细胞,台盼蓝染色计数后调整细胞密度至1×106个·mL-1,添加含10%胎牛血清FBS(Gibco),1%青链霉素(MP)的DMEM/F12培养基并置于37℃、5%CO2条件下培养。培养24h后用PBS轻轻洗去未贴壁细胞,更换新鲜的含有10%FBS,1%青链霉素,猪垂体来源FSH(1ng·mL-1,Sigma),雄烯二***(·L-1,Sigma)且含有不同浓度LPS(0、500、1000和2000ng·mL-1,:B5,sigma)的新鲜培养液对细胞进行刺激。E2测定组,在细胞培养24h换液时,更换为含有2%FBS的上述培养液。,K8试剂盒(上海翊圣)处理细胞[18-19],在培养箱内孵育4h后,利用全波长酶标仪测定在450nm处的吸光度。其吸光度数值与细胞增殖成正比。,用不含EDTA的胰酶消化并收集细胞,用FITCAnnexinV细胞凋亡检测试剂盒(BDPharmingen)处理细胞,避光孵育15min后,通过分析型流式细胞仪检测细胞凋亡。,分别利用细胞总RNA提取试剂盒(北京天根)提取细胞总RNA,并利用反转录试剂盒(TaKaRa)将其反转录为cDNA,利用ABI7500进行qRT-PCR(试剂购自TransgenBiotech)检测细胞生长增殖相关(FN1、IGF2、IGFBP2),增殖周期相关(CyclinD1、CyclinD2、P27kip)以及芳香化酶P450arom基因的相对表达量。qRT-PCR相关引物序列见表1。,用PBS溶液1∶5进行稀释,利用E2定量测定试剂盒(北京北方生物),采用酶联免疫竞争法检测细胞培养液中E2含量,经显色后在酶标仪测定吸光值(OD值),通过拟合浓度—吸光度曲线,计算出待测细胞培养液中E2含量。表1qRT-PCR相关引物Table1Primersusedinthereal-timequantitativePCRassayessionnumber引物序列(5'-3')Primersequence产物长度/bpLength退火温度/℃Annealingtemperatureβ-:R::ATAGCTGAGR::AGTTTGTCTGCGR::GCTGCTGCTGR::GCGAGGAACAGAAGTGCGR::AAGR::ATGAAAGGGACAR::GCTGCTCATTGGCTTACR:-PCR统计结果以0添加组为对照,运用2-△△Ct的方法计算各检测基因的相对表达量,用内参β-actin进行标准化处理。,不同处理间的显著性检验采用Duncan式多重比较。。结果采用“平均值±标准误”表示,P<,P<。。由图1可以看出,随着LPS浓度的升高,K8OD值呈现出剂量依赖性上升趋势,尤其当添加浓度达到1000和2000ng·mL-1时,细胞增殖显著高于对照组及500ng·mL-1处理组(P<)。(n=3,,LPS可以一定程度地抑制细胞凋亡,且随浓度的逐渐升高,凋亡细胞明显减少。图2显示,经LPS处理48h后,流式细胞仪检测的颗粒细胞中活细胞和凋亡细胞情况。图2A~D显示,随LPS添加量逐渐升高,凋亡细胞逐渐减少(右上和右下两个象限),活细胞数逐渐增多(左下象限)。图2E,F结果表明,添加1000和2000ng·mL-1LPS浓度处理组的活细胞率显著高于对照组及LPS浓度为500ng·mL-1处理组(P<)。;·mL-1LPS;·mL-1LPS;·mL-1LPS;;(n=3)。不同小写字母表示差异显著。;·mL-1LPS;·mL-1LPS;·mL-1LPS;;(n=3).Differentsmalllettersshowsignificantdifference(,LPS处理细胞24h,与增殖相关的基因FN1、IGF2和IGFBP2,与周期相关的基因CyclinD1、CyclinD2和P27kip的相对表达量。图3B显示,LPS处理细胞48h各基因的相对表达量。由图3可知,LPS处理细胞24及48h能够显著上调促进细胞增殖的基因FN1(P<,图3A;P<,图3B)和IGF2(P图3A显示,促进细胞周期的基因CyclinD1,CyclinD2在LPS处理24h时,基因相对表达量差异不显著,而图3B显示LPS处理48h时两基因相对表达量极显著上调(P<)。;。不同大写字母表示差异极显著。;(,测定培养液中E2结果见图4A,LPS各处理组颗粒细胞E2分泌量极显著低于对照组(P<),各处理组间差异不显著。与E2分泌相关的芳香化酶P450arom基因相对表达量测定结果见图4B。经LPS处理后,各处理组中P450arom基因相对表达量受到抑制,与对照组差异极显著(P<)。(n=3);(n=9)(n=3);(n=9)图4 Dose-effectofLPSonGranulosacellsestradiolsecretionandP450aromgeneexpression3讨论在畜牧业生产中,各种原因造成的微生物过度繁殖,使大量LPS进入动物体内,导致多种疾病发生,严重损害动物的生产繁殖性能,带来不可估量的经济损失[20-21]。本研究根据LPS对颗粒细胞增殖及E2分泌的直接影响,通过不同的试验手段,发现LPS处理离体猪颗粒细胞后,一定程度地促进细胞增殖及抑制细胞凋亡。促进细胞增殖的基因FN1、IGF2、IGFBP2及促进细胞分裂周期的基因CyclinD1、CyclinD2的相对表达量呈现显著上调,抑制细胞周期的基因P27kip显著下调。以上基因的相对表达量变化说明添加LPS对细胞增殖及周期的基因表达产生影响,从而引起细胞的增殖及凋亡。有研究报道显示,LPS能够促进小胶质细胞[22]、卵巢细胞[23]、小肠上皮细胞[24]等多种细胞的增殖。也有试验表明,LPS能够促进小鼠的睾丸支持细胞增殖[25-26]。在本研究中,LPS能够显著地促进猪颗粒细胞的增殖,抑制细胞的凋亡,推测可能是LPS通过模式识别受体TLR-4途径[7,27]激活下游NF-κB通路导致的。有相关文献证实,LPS能够经由TLR-4途径促进大鼠血管平滑肌细胞[28]和肝癌细胞[29]等增殖。以及激活下游NF-κB通路导致细胞呈现增殖,这在Hela细胞研究中有所报道[30],NF-κB也直接参与调控细胞的增殖凋亡基因的表达等[31-32]。NF-κB通路能够促进一系列抗炎因子及肿瘤坏死因子的表达[16],其中,由TNFα介导的细胞凋亡途径被激活,而LPS能够通过激活NF-κB途径抑制TNFα导致的细胞凋亡现象[33-34],已经在肝细胞[35]、角质细胞[36]、内皮细胞[37]等多种细胞中被证实。K8和流式细胞仪的检测结果也证实LPS具有促进猪颗粒细胞增殖和抑制凋亡的作用,且与增殖及增殖周期相关基因相对表达量的结果相吻合。LPS在影响颗粒细胞的正常增殖凋亡程序时,也强烈地抑制颗粒细胞分泌E2的功能。P450arom由CyP19A1基因编码,是雄激素向雌激素转化的关键酶,在颗粒细胞分泌E2中起重要作用。本研究发现LPS能够直接抑制其基因表达,导致E2分泌减少。[14][15]等在牛颗粒细胞上得到的结果相似,证明LPS确实可以直接抑制颗粒细胞分泌E2的功能。而E2的正常分泌被抑制将导致动物生殖内分泌的紊乱,继发一系列不良反应。这一结果也解释了因疾病或因环境问题而引起的LPS感染所造成的安静发情、断续发情、卵泡发育受阻、排卵数下降、产后乏情、产仔数下降等现象。4结论LPS通过颗粒细胞的分子调控及基因表达影响其正常的增殖、凋亡,同时LPS可以直接抑制颗粒细胞分泌雌二醇。Reference(References):[1]李桂杰,朱瑞良,***的研究进展[J].山东农业大学学报,1999,30(2):93-,ZHURL,[J].JournalofShandongAgriculturalUniversity,1999,30(2):93-98.(inChinese)[2]郭萌,李冠民,***研究进展[J].中国实验动物学报,2009,17(5):397-,LIGM,[J].ActaLaboratoriumAnimalisScientiaSinica,2009,17(5):397-400.(inChinese)[3]MARCHESINIG,DENARDIR,GIANESELLAM,[J].BMCVetRes,2013,9:98.[4][J].ReprodFertilDev,2011,24(1):252-257.[5]江丹莉,张鑫杰,潘远基,、鹅血液内***含量、种鹅繁殖性能和雏鹅生长性能的影响[C].哈尔滨:第十四次全国家禽科学学术讨论会,2009:618-,ZHANGXJ,PANYJ,,thecontentofbloodendotoxin,thebreedingperformanceandthegrowthperformanceofgeese[C].Harbin:FourteenthNationalSymposiumonPoultryScience,2009:618-623.(inChinese)

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