文档介绍：扫描电镜样品的准备
A 悬浮培养的细胞、细菌、血细胞、精子等；
细胞使用PBS或无血清培养基离心漂洗1~2次以去除血清，离心转速依据不同离心机、不同样品自定，总时间控制在5min内；%戊二醛吹悬，滴加在预先置入青霉素小瓶中的托盘，4℃静置沉降2~3天，在托盘周围加入PBS，以防止样品干燥。
B贴壁培养的细胞：
在培养皿中预先加入盖玻片，使细胞贴附于盖玻片上；PBS或无需请培养基漂洗后，放置在培养板室温固定1h，4℃ 3 h，注意放置干燥，自行转入青霉素小瓶中，加满PBS送检。
SEM标本处理必须使用玻璃容器，需明确所用盖玻片尺寸可以放入青霉素瓶。
C组织取材
样品观察表面可达8~10mm2,高度小于5mm左右；
样品表面在固定前必须清洁：使用生理盐水或PBS冲洗掉表面的灰尘以及不需要观察的蛋白、粘液等。能够明确标识标本的观察面。消化道、呼吸道、血管、***官、泌尿等官腔内表面，尤其要注意先清洗再固定。
如需要观察脏器内结构，应依照不同的实验目的，决定目的脏器是否需要灌注清洗；
%戊二醛浸没标本，室温1h，4℃固定3h以上，换PBS送检。
附：%戊二醛的配制
Step 1:
：
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磷酸二氢钠（）　　　　
磷酸氢二钠 ()　　　　29克
双蒸馏水　　　　　　　　　　加至500毫升

Step 2:
戊二醛固定液的配制：
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25% 戊二醛　　　　　　1ml
双蒸馏水　　　　　　　4ml
　　5ml
戊二醛最终浓度　　　　%
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透射电镜样品的制备
一、培养细胞
本方法适用于贴壁、悬浮培养的细胞；细菌；精子；血细胞等。
细胞数量：106或6孔板一孔的细胞达到生长面积的80%或以上。
离心收集：消化或用细胞刮刮下细胞。如细胞状态一般或漂浮物较多，建议更换新培养基；如观察自噬，建议刮下细胞。
离心速度、时间依据不同离心机、不同样本自行定义，时间在5min内；
细胞团大小：~,或者参照1元硬币的厚度；
细胞离心成团后去除上清，%电镜用戊二醛500μl固定，切勿吹悬，室温1h，4℃ 3 h后，去除戊二醛加满PBS后4℃放置或送检。
注意：固定细胞不需要吹悬，细胞不宜过多，过多会导致固定液无法迅速渗透到底部细胞；
二、生物组织
迅速剪下/切下相应位置，%戊二醛中，依据