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文档介绍

文档介绍:实 验 三 贴壁细胞培养
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用倒置显微镜观察细胞,评估细胞(喉癌)生长状态以及确认无细菌和真菌污染。弃旧培养液:吸除或倒掉培养皿中的旧培养基。

2) 漂洗:每个培养皿加1mL PBS清洗单层细胞,漂洗贴壁细胞一次后倒掉。
细胞培养方法
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消化:每个dish加入1mL消化液
(%:1),轻轻摇动培养皿,经消化液铺满所有细胞表面,在倒置显微镜下待1/2细胞变圆后加适量完全培养液终止。
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离心:1000rpm、5分钟离心沉淀细胞,去除培养基(含胰酶及EDTA)。

5) 计数:离心前先滴好计数板待计数,计算细胞的浓度(个/ml)。
取对数生长期于10cm ×105/孔(5×105/孔)密度铺于6孔板,再用完全培养液补至2 ml/孔。
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实验四 流式细胞仪检测贴壁细胞凋亡
2015-5-20
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实验原理
细胞凋亡检测试剂盒(Cell Cycle and Apoptosis Analysis Kit)是一种采用经典的碘化丙啶染色(PI staining)方法进行细胞周期与细胞凋亡分析的检测试剂盒。碘化丙啶(Propidium Iodide,PI)是一种可以嵌合到双链DNA和RNA的碱基对中并与之结合的荧光染料,无碱基特异性。碘化丙啶与双链DNA结合后可产生荧光,并且荧光强度和双链DNA的含量成正比。细胞内的DNA被Propidium Iodide染色后,可以用流式细胞仪对细胞进行DNA含量测定,然后根据DNA含量的分布情况,可以进行细胞周期和细胞凋亡的分析。
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实验材料
胰蛋白酶消化液(% EDTA)
PBS缓冲液
预冷固定液(4%多聚甲醛)
流式细胞仪
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操作步骤
细胞样品的制备(6孔板贴壁细胞)
1、PBS清洗细胞,用1ml胰蛋白酶消化细胞(10min)至可以被轻轻用移液管或枪头吹打下来时,加入1ml细胞培养液终止反应,吹打下所有的贴壁细胞,并轻轻吹散细胞;
2、收集上述细胞悬液至15ml离心管;
3、4℃,1000rpm 离心5min,弃上清;
4、加入1mlPBS缓冲液,重悬细胞,;
5、重复步骤 3、4;轻弹离心管底以适当分散细胞。
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细胞固定
加入1ml冰浴预冷的4%多聚甲醛中,轻轻吹打混匀,4℃条件下固定2h或更长时间。
细胞清洗
1、4℃,1000rpm离心5min,弃上清;
2、加入1mlPBS缓冲液,重悬细胞,;
3、重复步骤1、2;
4、轻弹离心管底以适当分散细胞。
操作步骤
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操作步骤
PI染色 (一步法)
PI染色工作液配制: 根据待测样品的数量,取适量的试剂A ,试剂B ,试剂C 混合形成PI染色工作液(见实验方案表).
在每个待测细胞样品中,加入500ul配制好的PI染色工作液,轻轻重悬细胞沉淀,置于37度避光水浴30min.
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