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药理学实验的基本
药理学实验概述
一、药理学实验课的目的
在实验过注射以及其他实验操作。
大鼠的抓取固定方法  大鼠的抓取斯基本同小鼠，只不过大鼠比小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，否则会被咬伤手指，抓取时为避免咬伤，可带上帆布手套。
动物的抓取
实验动物的给药方法
经消化道给药
1．小鼠灌胃法灌胃法
12~16号注射针头，尖端部磨钝，针头长4~5cm进针2~3cm后。
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大鼠灌胃法
长约6～8cm， ，
一次灌胃量一般在1ml/100g体重。
二、注射给药法
小鼠皮下注射
通常在背部皮下注射。注射时以左手拇指和中指将小鼠颈背部皮肤轻轻提起，食指轻按其皮肤，使其形成一个三角形小窝，右手持注射器从三角窝下部刺入皮下，轻轻摆动针头，如易摆动时则表明针尖在皮下，此时可将药液注入，针头拔出后，以左手在针刺部位轻轻捏住皮肤片刻，以防药液流出。
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大鼠皮下注射
注射部位可在背部或后肢外侧皮下，操作时轻轻提起注射部位皮肤，将注射针头刺入皮下后推注药液。
一次注射量不超过1ml/100g体重。
2．腹腔注射法
（1）小鼠腹腔注射
左手固定动物，使腹部向上，头呈低位。右手持注射器，在小鼠下腹部腹白线稍向左或右的位置，从下腹部朝头方向刺入皮肤，针头到达皮下后， 沿皮下向前推进3～5mm，然后使注射器针头与皮肤呈45°角刺入腹膜。 针头刺入腹膜后感抵抗力消失，此时在保持针头不动的状态下回抽针栓，如无回血或尿液，则可推入药液。
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大鼠、豚鼠、兔、猫等的腹腔注射皆可参照小鼠腹腔注射法。但应注意家兔与猫在腹白线两侧注射（应在离腹白线约1cm处进针）。
3．肌肉注射法
小鼠、大鼠、豚鼠肌肉注射 一般因肌肉少，不作肌肉注射，如需要时，可将动物固定后，一手拉直动物左或右侧后肢，将针头刺入后肢大腿外侧肌肉内，
，针头选用5～7号。
兔肌肉注射 可选两臂或股部。
静脉注射法
小鼠大鼠一般采用尾静脉注射。
注射前先将动物固定于固定器内（可采用铁丝笼、金属筒或底部有小孔的玻璃筒），使其整个尾部外露，
以右手食指轻弹尾尖部，必要时可用45～50℃的温水浸泡尾部1～2分钟或用75％乙醇擦拭尾部，或者将小鼠先放在40~50℃左右的加热板上做运动，使其全部血管扩张充血。
以拇指与食指捏住尾根部两侧，无名指和小指夹持尾尖部，中指从下托起尾巴固定之。
选择一根最为充盈的血管，右手持4号针头使其与尾部呈30度角刺入静脉，针头在静脉内平行推进少许，左手三指连针头和鼠尾一起捏住固定，以防动物活动时针头脱出。回抽见血，且推动药液无阻力、并可见沿静脉血管出现一条白线说明针头在血管内，可注药
。如遇到阻力较大，局部发白变硬时，说明针头不在静脉内，需拔出针头重新穿刺。注射完毕后拔出针头，轻按注射部止血。一般选择尾两侧静脉，针刺宜从尾尖端开始，渐向尾根部移动，以备反复应用。
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家兔：家兔静脉注射一般采用耳缘静脉。
注射前先剪除其表面皮肤上的毛并用水湿润局部，血管即显现出来。可先轻弹或用酒精棉球揉擦耳尖部并用左手食指和中指轻压耳根部，拇指小指夹住耳边缘部分，以左手无名指放在其下作垫，待静脉显著充盈后，右手持带有6~8号针头的注射器刺入静脉（第一次进针点要尽可能靠远心端，以备反复应用），顺着血管平行方向深入1厘米后，放松对耳根处血管的压迫，左手拇指和食指移至针头刺入部位，将针头与兔耳固定 针头刺入血管后再稍向前推进，轻轻推动针栓，若无阻力和局部皮肤发白、隆起现象，即可进行药物注射，
实验动物的处死方法
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本法最常用于小鼠。用拇指和食指压住小鼠头的后部，另一手捏住小鼠尾巴，用力向后上方牵拉，使之颈椎脱臼，延脑与脊髓离断而死亡。处死大鼠也可用此法，但需较大力气。
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主要用于大动物的处死。用注射器将空气快速注入静脉或心脏，使动物发生静脉空气栓塞，特别是肺动脉栓塞而致死。
兔一般选用耳缘静脉，狗由前肢或后肢皮下静脉注射。
一般兔与猫可注入空气10～20ml；狗需注入70～150ml空气。
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用粗针头一次针刺心脏大量抽取血液，可致动物死亡。此法常用于豚鼠、猴等
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大鼠可采取摘除眼球，由眼眶动脉放血致死。断头、切开股动脉亦可使其大量失血而死。家兔可在