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失血性休克实验报告.docx

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失血性休克实验报告.docx

上传人:diqiuren3210 2020/5/20 文件大小:1.18 MB

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失血性休克实验报告.docx

文档介绍

文档介绍:综合实验三重症急救——失血性休克及抢救报告人:徐子岩实验名称:失血性休克实验时间:2017年5月25日14:00-22:00实验地点:仙林基础医学楼机能学实验室实验人员:主管——邢思妍主操作人——许雅丽仪器监护——杨雪助手——徐子岩实验目的:学****动脉插管测量和记录动脉血压并观察神经体液因素对动脉血压的调节作用。复制家兔失血性休克模型,探讨失血性休克的发病机理并分析抢救措施。观察失血性休克时和抢救过程中动物的代谢功能代谢变化及微循环改变。观察不同药物对动物血压指标的影响,并学****其作用机制。实验材料:[动物]新西兰纯种白兔[药品]20%乌拉坦、利多卡因注射液、%***化钠注射液、125U/ml肝素溶液、1%普鲁卡因,%高渗盐水、5%葡萄糖、去氧肾上腺素注射液,异丙肾上腺素注射液,重酒石酸去甲肾上腺素注射液,盐酸肾上腺素注射液,佩尔(乌拉地尔),***甘油注射液。[器材]手术器械,注射器(1ml、5ml、10ml),动脉插管,压力换能器、生物信号采集处理系统、呼吸机。针头(9号、16号)、头皮针、动脉导管、气管插管、兔手术台、听诊器、压力换能器、HX200型呼吸流量换能器、RM6240多道生理信号采集处理系统、输血输液装置、微循环观察装置。实验步骤:动物体征:,排便量大,难麻。%乌拉坦(按5ml/kg)麻醉。待动物麻醉后,于仰卧位固定在兔手术台上。.连接心电电极,在生物信号采集系统中记录心电图。.手术局部剪毛,颈前正中切开皮肤6-8cm,-2cm,用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉,暴露气管及与气管平行的左右血管神经鞘,细心分离一侧鞘膜内的颈总动脉和迷走神经。在气管下穿两根粗结扎线备用。.全身肝素化:经耳缘静脉注射125U/ml的肝素1ml/Kg进行全身肝素化。.结扎左颈总动脉远心端,做左颈动脉插管,将导管与动脉结扎固定,接上压力换能器,在生物信号采集系统中记录血压。.行右颈静脉插管,连接输液器,按5-6滴/分钟输入生理盐水,保持输液管道畅通。.在环状软骨下约1cm处做倒T型剪口,清除气管切口及气管里的血液和分泌物,插入气管插管并结扎固定。在生物信号采集系统中记录呼吸流量。.监测正常血压、心率、呼吸频率,用听诊器听心音强度、肺部呼吸音等。取动脉血进行血气分析。:在腹部左侧距中线5cm处剪毛,做长度约6cm的纵行切口,打开腹腔。将小肠襻置于微循环观察盒内,利用医学图象分析系统,打开微循环测量项,通过计算机采集图象,观察失血前后微循环变化。、心率、呼吸等生理指标。家兔全身肝素化:经耳缘静脉注射125U/ml的肝素1ml/Kg进行全身肝素化。从颈动脉放血,至血压下降到40mmHg停止放血,当血压代偿性回升时,可以继续放血,直至血压维持在40mmHg,持续15min,观察并记录上述指标的变化。适当选择实验室提供的药品,自行设计抢救方案并加以实施。实验步骤实施过程:14:25注射乌拉坦,快推3ml,至14:30已推注9ml乌拉坦。:38因兔子还没有进入麻醉状态,补乌拉坦3ml。:24麻醉成功,仰卧位固定在兔手术台上。:42连接心电电极,心电正常。:19分离出右侧的颈静脉、气管、颈总动脉,发现颈外静脉怒张。16:33动脉插管成功,此时,收缩压102,舒张压80,心率42816:43取血做生化分析,,。取血后心率200,一段时间后波形等恢复正常。:52行气管插管,气管内无血凝块及分泌物,擦管过程中因操作问题进血,有咯血现象。16:57气管插管成功,此时心率138:01行颈静脉插管,17:27插管成功。17:30从颈静脉注射3ml肝素,行全身肝素化。17:40行腹部手术,观察到橙黄色液体,怀疑有腹水,18:09找到小肠,过程中未观察到小肠和大肠的蠕动。此时,收缩压83,舒张压46,心率172,脉压差42。微循环观察时,因麻醉不深,多次抽动。19:14放血20ml,放血后,血压降至35,19:17回升至42mmHg,19:25回升至45mmHg。19:26取血5ml做血气分析后,再取8ml的血,该过程共放血13ml,19:29平均压为31,心率达900,后略升至34。19:34再次抽血7ml,发现微循环中出现单个红细胞流动现象,:37开始抢救,会输家兔的血液,观察到微循环倒流,呼吸加深加快,平均压上升至45,后又上升至57。:41血浆输完,换生理盐水补液,抢救成功。:04注射酚妥拉明和去甲肾上腺素共20ml(浓度:100ml生理盐水+1ml酚妥拉明+),观察到血压下降。20:07补乌拉坦3ml。20:14注射5ml去氧肾上腺素(浓度:30