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TCT制片质量控制研究(共4745字).doc

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TCT制片质量控制研究(共4745字).doc

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TCT制片质量控制研究(共4745字).doc

文档介绍

文档介绍:TCT 制片质量控制研究(共 4745 字) 摘要: 目的进行液基薄层细胞学( TCT ) 制片质量控制, 提高细胞学检测的特异性和诊断的准确率。方法分析我院 7018 例妇科液基细胞学病例, 对制片过程( 取材、制片、固定、染色、封片) 进行质量控制, 有宫颈上皮细胞异常者做病理组织学检查。结果 TCT 优片率 % ( 6989/7018 ),3 例不满意标本。部分细胞学阳性病例进一步在我院行***镜检查并取活检, LISL 、 HISL 和鳞状细胞癌的细胞学与病理组织学符合率分别为 % ( 23/32 )、 % ( 10/11 )和 100% 。结论 TCT 制片质量控制有利于提高宫颈病变的诊断, TCT 在宫颈病变的筛查无损伤, 易操作, 敏感性高,可作筛查宫颈癌的检查。关键词:宫颈肿瘤; TCT 技术;筛查;质量控制引言液基薄层细胞学( TCT ) 技术的应用为细胞病理医生提供了高质量的标本, 亦是临床妇科作为宫颈癌早期筛查诊断的重要手段[1] 。液基薄层细胞学( TCT ) 标本制片质量控制是准确发现病变的前提, 它包括标本收集、涂片制备、固定染色等。为更好地将 TCT 技术服务临床诊断, 现分析 7018 例 TCT 检查标本结果,以探讨提高 TCT 标本质量的方法。 1 资料与方法 一般资料。收集本医院病理科 2013 年 10 月至 2014 年 10 月行宫颈脱落细胞 TCT 检查的标本 7018 例,主要来源于本院妇科门诊患者及体检中心体检者。不满意标本 3例, 重新取样合格后进行检测。患者年龄 17-88 岁,临床表现多为白带异常、***瘙痒、接触性出血、宫颈炎等,部分病例无症状行体检。 方法。 标本采集: 妇科医师先拭去过多的白带或宫颈口的血液后,用采样刷插入宫颈管内, 轻缓施力顺时针旋转 5周, 不留死角, 收集宫颈口的脱落细胞,将宫颈刷放入盛有保存液的小瓶内,送病理科检测。 涂片制备: TCT 制片是自动制片涂片,开启 Thinprop2000 机器,将放有保存液的标本瓶放入固定槽, 套上过滤膜, 通过机器的搅拌分散细胞、采集、转送细胞[2] ,利用真空虹吸作用将细胞均匀喷涂在经静电处理过的玻片上, 并自动将玻片送入固定瓶,固定液采用 95% 乙醇,固定时间十五分钟以上。对于多血性及多粘液标本的处理,可经离心震荡制作涂片。 涂片染色: 采用巴氏改良染色法,按顺序从 95% 酒精固定 15 分钟,水洗,浸入改良 Gill 半氧化苏木素 2min ,水洗, 1% 氨水返蓝 1min , 水洗, 浸入 95% 酒精 1min , 桔黄 G10s , 95% 酒精 IIIII I 各 10s , 浸入 EA50 染液 1min , 95% 酒精 IIIIII 各 10s , 无水酒精 IIIIII 各 2min ,浸入二甲苯 IIIIII 各 2min ,中性树胶湿封。 细胞学诊断。采用 TBS 分类标准[3] : 无上皮内病变或恶性病变( NILM ); 意义不明的非典型鳞状细胞( ASCUS ); 不除外高度鳞状上皮内病变的非典型鳞状细胞( ASC-H ) ;低度鳞状上皮内病变( LSIL ), 包括人乳头瘤病毒( HPV ) 感染和宫颈上皮内瘤变( CIN )I级; 高度鳞状上皮内病变( HSIL ), 包含 CINII 级、 CINIII 级或中重度异型增生及原位癌( CIS ) ;鳞状细胞癌( SCC ); 非典型腺细胞( AGC ); 腺癌。该分类系统也对标本质量进行评估,对微生物和炎症程度或萎缩等分别加以描述。 TBS 报告正常或炎性反应作为细胞学阴性, ASCUS 及以上病变为细胞学阳性。 优等片诊断标准。据子宫颈细胞学 Bethesda 报告系统第二版[4] 规定:一张质量好的 TCT 片最低细胞数量至少需要有 5000 个保存完好和形态清晰的鳞状细胞。片子干净,色彩鲜艳,无气泡,封胶适量, 镜下细胞核、质清楚, 角化细胞、非角化细胞一目了然,有助于诊断,此为优等片。 分析方法。以优等片为标准,分析不满意片子的原因以及改进方法, 进行质量控制。细胞学阳性者行***镜检查, 在***镜下对病变处取材做病理活检, 后行常规制片, HE 染色, 光镜下观察。对检查的结果进行分析并以病理活检诊断的结果为标准与细胞学进行对照。 2 结果 制片结果。 7018 例片子中,有 6989 例达到优等片这个标准,优片率 % ( 6989/7018 ); 29 例不满意片子原因如下: 5 例制片染色太淡,核红,原因是 Gill 苏木素染色时间短,或返蓝时间过短, 或染液( 包括桔黄 G和 EA50

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