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上传人:suijiazhuang1 2020/12/24 文件大小:572 KB

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电子显微镜使用方法.docx

文档介绍

文档介绍:五、电镜标本制作方法
电镜标本用于观察组织细胞的超微结构。 扫描电镜用于细胞表面的观察, 透射电镜用于细胞内部结构的观察。 现以透射电镜标本的制作为例作简
要介绍:
(一) 取材标本的新鲜程度要求高于光镜标本,组织块小于 lmm3。
(二) 固定 常用的固定液有 %戊二醛磷酸缓冲液和 1 %锇酸。这些液体穿透力较强, 能稳定和保存细胞内的结构。 固定温度应控制在 0〜4 "C,
固定时间1~2小时。
(三) 冲洗 冲洗液由0. 2mol/L磷酸缓冲液()与双蒸水等量混合配成。冲洗组织块 。
(四) 脱水 脱水剂多采用浓度递增的酒精和***,从 50% 70 % 90 %酒精 1/2 90 %酒精+1/2 90 %***混合液 90 %***(以上步骤均在
0~4C冰箱中进行)100 %***,间隔10~15分钟。
(五) 包埋 包埋剂为环氧树脂 618或812和固化剂十二碳烯基丁二酸酐 (简称DD-SA),加入适量增塑剂苯甲酸二丁酯 (简称DDP)。为了使反应速
度增快,可加入加速剂 2, 4, 6-三[(二甲氨基)***]苯酚(简称DMP-30)。
包埋剂配方: 环氧树月旨618或812 60 %
DDSA
40 %
DBP
3 %
DMP-30
1 %
上述试剂依次加入,边加边搅拌,全部加完后再充分搅拌 10〜15分钟,静置于35~40 C温箱内排出气泡。包埋前组织块必须浸透,入无水***加等
体积包埋剂室温 3小时,纯包埋剂 37 C 2小时。包埋时先将纯包埋剂倒入胶囊或含硅胶的包埋槽内,置入组织块。包埋后在 60C温箱中烘2〜3天
后硬化成块,即可剥去胶囊或包埋槽。
(六) 将组织块修成塔形,尖端面积为 ).3mm左右,用超薄切片机切成 50mm厚的超薄切片,再置于铜网上。
(七) 染色 常用的染液有1~2%醋酸铀和枸橼酸铅。醋酸铀染色是在组织块进行脱水过程中进行的,而枸橼酸铅染色则多用于片染。最后,将载
有切片的铜网置于透射电镜内观察和摄影。
由于电镜电子束穿透能力的限制,必须把标本切成厚度小于 ,这种薄片称为超薄切片。常用的超薄切
片厚度是50-70nm。
在透射电镜的样品制备方法中,超薄切片技术是最基本、最常用的制备技术。超薄切片的制作过程基本上和石蜡切片相似,需 要经过取材、固定、脱水、浸透、包埋聚合、切片及染色等步骤。
一取材的基本要求
组织从生物活体取下以后,如果不立即进行适当处理,会由于细胞内部各种酶的作用,出现细胞自溶现象。此外,还可能由于 污染,微生物在组织内繁殖使细胞的微细结构遭受破坏。因此,为了使细胞结构尽可能保持生前状态,必须做到快、小、准、 冷:
(1).动作迅速,组织从活体取下后应在最短时间内 (争取在1分钟内)%戊二醛固定液。
⑵.所取组织的体积要小,一般不超过1mnMmm<1mm也可将组织修成1mm1mm2mn大小长条形。因为固定剂的渗透能力较弱, 组织块如果太大,块的内部将不能得到良好的固定。
(3).机械损伤要小,解剖器械应锋利,操作宜轻,避免牵拉、挫伤与挤压。
⑷.操作最好在低温(0 C〜4C)下进行,以降低酶的活性,防止细胞自溶。
(5).取材部位要准确。
取材方