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PCR扩增反应的操作实验报告1.docx

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PCR扩增反应的操作实验报告1.docx

文档介绍

文档介绍:PCR 扩增反应的操作实验报告
实验原理:
以单链 DNA 为模板,4 种 dNTP 为底物,在模板3'末端有引物存在的情况下,用酶进 行互补链的延伸,多次反复的循环能使微量的模板DNA得到极大程度的扩增。在微量离心 管中,加入与待扩增PCR 扩增反应的操作实验报告
实验原理:
以单链 DNA 为模板,4 种 dNTP 为底物,在模板3'末端有引物存在的情况下,用酶进 行互补链的延伸,多次反复的循环能使微量的模板DNA得到极大程度的扩增。在微量离心 管中,加入与待扩增的DN***段两端已知序列分别互补的两个引物、适量的缓冲液、微量 的DNA膜板、四种dNTP溶液、耐热Taq DNA聚合酶、Mg2d等。反应时先将上述溶液加 热,使模板DNA在高温下变性,双链解开为单链状态;然后降低溶液温度,使合成引物在 低温下与其靶序列配对,形成部分双链,称为退火;再将温度升至合适温度,在 Taq DNA 聚合酶的催化下,以dNTP为原料,引物沿5'-3'方向延伸,形成新的DN***段,该片段 又可作为下一轮反应的模板,如此重复改变温度,由高温变性、低温复性和适温延伸组成一 个周期,反复循环,使目的基因得以迅速扩增。因此PCR循环过程为三部分构成:模板变 性、引物退火、热稳定DNA聚合酶在适当温度下催化DNA链延伸合成。
实验步骤:一、PCR反应的条件
PCR反应条件为温度、时间和循环次数。
1.温度与时间的设置
变性温度与时间:变性温度低,解链不完全是导致PCR失败的最主要原因。 一般情况下,93°C〜94°C lmin足以使模板DNA变性,若低于93°C则需延 长时间,但温度不能过高,因为高温环境对酶的活性有影响。此步若不能 使靶基因模板或PCR产物完全变性,就会导致PCR失败。
退火(复性)温度与时间:退火温度是影响PCR特异性的较重要因素。变 性后温度快速冷却至40C〜60°C,可使引物和模板发生结合。由于模板 DNA比引物复杂得多,引物和模板之间的碰撞结合机会远远高于模板互补 链之间的碰撞。退火温度与时间,取决于引物的长度、碱基组成及其浓度, 还有靶基序列的长度。对于20个核苷酸,G+C含量约50%的引物,55C为 选择最适退火温度的起点较为理想。
延伸温度与时间:Taq DNA聚合酶的生物学活性:70〜80C,150核苷酸 /S/酶分子;70C,60核苷酸/S/酶分子;55C,24核苷酸/S/酶分子;高 于90C时,DNA合成几乎不能进行。
PCR反应的延伸温度一般选择在70〜75C之间,常用温度为72C,过高 的延伸温度不利于引物和模板的结合。PCR延伸反应的时间,可根据待扩 增片段的长度而定,一般1kb以内的DN***段,延伸时间lmin是足够的。 3〜4kb的靶序列需3〜4min;扩增10kb需延伸至1